Aplicaciones biotecnológicas de los microorganismos
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Palabras clave

biotecnología
microbiología de alimentos
biocombustibles
vacunas, biopolímeros
biosensores
microbiología ambiental
biofábricas

Cómo citar

Ostos Ortíz, O. L., Rosas Arango, S. M., & González Devia, J. L. (2020). Aplicaciones biotecnológicas de los microorganismos. Nova, 17(31), 129 - 163. https://doi.org/10.22490/24629448.3629

Resumen

La biodiversidad de los microorganismos así como la naturaleza única y las capacidades biosintéticas en condiciones ambientales específicas hacen que los microorganismos sean los probables candidatos para resolver problemas de escases de alimentos, contro de plagas, biodegradación de los xenobióticos, descomposición de la basura, las pilas de desechos producidas, entre otros.

Los microorganismos ofrecen un gran potencial para la exploración de moléculas y procesos, y el conocimiento de las especies no convencionales, especialmente dentro del grupo Archaea, ha estimulado la investigación molecular de genes de interés. Estos nuevos genes pueden incorporarse mediante tecnología recombinante en especies biológicamente conocidas, como E. coli y S. cerevisiae, para la síntesis a gran escala de productos.

La microbiología tecnológica tiene grandes potenciales para explorar y obstáculos por superar. Por lo tanto, solo la investigación en esta área resulta prometedora para científicos en todo el mundo.

En la presente revisión se presentan las aplicaciones más significativas de los microorganismos en la industria de alimentos, la agricultura, compuestos químicos, combustibles, farmacología y materiales.

https://doi.org/10.22490/24629448.3629
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Citas

Vitorino L.C., Bessa A.L.(2017). Technological Microbiology: Development and Applications. Front Microbiol. 2017; 8: 827. Published online 2017 May 10. doi: 10.3389/fmicb.2017.00827

McGovern P. E., Glusker D. L., Exner L. J. (1996). Neolithic resinated wine. Nature 381 480–481. 10.1038/381480a0 [Cross Ref ]

Valamoti SM, Mangafa M., Koukouli-Chrysanthaki CH, Malamidou D. (2007). Prensados de uva del norte de Grecia: ¿el vino más antiguo del Egeo? La antigüedad 81 54-61. 10.1017 / S0003598X00094837

Borneman AR, Schmidt SA, Pretorius IS (2013). A la vanguardia de la biotecnología de la uva y el vino. Tendencias genet. 29 263–271. 10.1016 / j.tig.2012.10.014 [ PubMed ]

Samuel D. (1996). Investigation of ancient Egyptian baking and brewing methods by correlative microscopy. Science 273 488–490. 10.1126/science. 273.5274.488 [PubMed] [Cross Ref ]

Sicard D., Legras J.-L. (2011). Bread, beer and wine: yeast domestication in the Saccharomyces sensu stricto complex. C. R. Biol. 334 229–236. 10.1016/j.crvi.2010.12.016 [PubMed] [Cross Ref ]

Gal J. (2008). El descubrimiento de la enantioselectividad biológica: Louis Pasteur y la fermentación del ácido tartárico, revisión y análisis de 1857-A 150 años después. La quiralidad 20 5–19. 10.1002 / chir.20494 [ PubMed ]

Pasteur L. (2002). Summary report of the experiments conducted at Pouilly-le-Fort, near Melun, on the anthrax vaccination, 1881. Yale J. Biol. Med. 75 59–62. [PMC free article] [PubMed]

Plotkin SA, Orenstein WA, Offit PA (2008). Vacunas de 5ª ed. Filadelfia, PA: Saunders / Elsevier; 399–434.

Wang Z., Zhuge J., Fang H., Prior BA (2001). Producción de glicerol por fermentación microbiana: una revisión. Biotecnol. Adv. 19 201–223. 10.1016/ S0734-9750 (01) 00060-X [ PubMed ]

Neushul P. (1993). La ciencia, el gobierno y la producción en masa de la penicilina. J. Hist. Medicina. Allied Sci. 48 371–395. 10.1093 / jhmas / 48.4.371 [ PubMed ]

Jacob F., Perrin D., Sanchez C., Monod J. (1960). L’operón: grupo de géneros de expresión coordina para un operador. Comp. Desgarrar. Acad Sci. París 250 1727–1729. [ PubMed ]

Ames BN, Martin RG (1964). Aspectos bioquímicos de la genética: el operón. Ana. Rev. Biochem. 33 235–258. 10.1146 / annurev.bi.33.070164.001315 [PubMed ]

Holloway BW (1969). Genética de las pseudomonas . Bacteriol. Rev. 33 419–443. [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Holloway BW (2014). “Mis recuerdos de las pseudomonas en el siglo veinte”, en Pseudomonas eds Ramos J.-L., Goldberg JB, Filloux A., editores. (Dordrecht: Springer;) 289–314. 10.1007 / 978-94-017-9555-5- 11

Smith HO, Nathans D. (1973). Una nomenclatura sugerida para la modificación del huésped bacteriano y los sistemas de restricción y sus enzimas. J. Mol. Biol. 81 419–423. 10.1016 / 0022-2836 (73) 90152- 6 [ PubMed ]

Arber W. (1974). Modificación y restricción del ADN. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 14 1–37. 10.1016 / S0079-6603 (08) 60204-4 [ PubMed ]

Walsh G. (2012). Nuevos biofarmacéuticos. Biofarm. En t. 25 34–38.

Cohen SN, Chang AC, Boyer HW, Helling RB (1973). Construcción de plásmidos bacterianos biológicamente

funcionales in vitro . Proc. Natl Acad Sci. USA 70 3240–3244. 10.1073 / pnas.70.11.3240 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Berg P., Mertz JE (2010). Reflexiones personales sobre los orígenes y el surgimiento de la tecnología del ADN recombinante. Genética 184 9–17. 10.1534 / genetics.109.112144 [ Artículo libre de PMC ] [PubMed ]

Cheng L., Chen W., Adams TS, Wei X., Li L., Mc- Cormack ML, y otros. (2016). Los hongos micorrícicos y las raíces son complementarios en el forrajeo en parches de nutrientes. Ecología 97 2815–2823. 10.1002 / ecy.1514 [ PubMed ]

Saiki R. K., Gelfand D. H., Stoffel S., Scharf S. J., Higuchi R., Horn G. T., et al. (1988). Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase. Science 239 487–491. 10.1126/ science.2448875 [PubMed] [Cross Ref ]

Simon D., Chopin A. (1988). Construcción de una familia de plásmidos vectoriales y su uso para la clonación

molecular en Streptococcus lactis . Biochimie 70 559–566. 10.1016 / 0300-9084 (88) 90093-4 [PubMed ]

Olsen J. L. (2016). “Polymerase chain reaction,” in Encyclopedia of Immunotoxicology ed. Vohr H.-W., editor. (Berlin: Springer; ) 715–720. 10.1007/978-3- 642-54596-2-1193 [Cross Ref ]

Woese CR, Fox GE (1977). Estructura filogenética del dominio procariótico: los reinos primarios. Proc. Natl Acad. Sci. USA 74 5088–5090. 10.1073 / pnas.74.11.5088 [ Artículo libre de PMC ] [ Pub-Med ]

Woese CR, Kandler O., Wheelis ML (1990). Hacia un sistema natural de organismos: propuesta para los dominios Archaea, Bacteria y Eucarya. Proc. Natl Acad. Sci. USA 87 4576-4579. 10.1073 / pnas.87.12.4576 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Brown CT, Hug LA, Thomas BC, Sharon I., Castelle CJ, Singh A., et al. (2015). Biología inusual en un grupo que comprende más del 15% de las bacterias del dominio. Naturaleza 523 208-211. 10.1038 / nature14486 [ PubMed ]

Rinke C., Schwientek P., Sczyrba A., Ivanova NN, Anderson IJ, Cheng J.-F., et al. (2013). Información sobre la filogenia y el potencial de codificación de la materia oscura microbiana. Nature 499 431–437. 10.1038 / nature12352 [ PubMed ]

Castelle CJ, Wrighton KC, Thomas BC, Hug LA, Brown CT, Wilkins MJ, et al. (2015). La expansión genómica del dominio Archaea destaca los roles de los organismos de los nuevos filos en el ciclo del carbono anaeróbico. Curr. Biol. 25 690–701. 10.1016 / j.cub.2015.01.014 [ PubMed ]

Spang A., Ettema TJG (2016). Diversidad microbiana: el árbol de la vida viene de la edad. Nat. Microbiol. 1 16056 10.1038 / nmicrobiol.2016.56 [ Pub- Med ]

Coker JA (2016). Extremófilos y biotecnología: usos actuales y perspectivas. F1000 Res. 5 396 10.12688 / f1000research.7432.1 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Waditee-Sirisattha R., Kageyama H., Takabe T. (2016). Recursos de microorganismos halófilos y sus aplicaciones en biotecnología industrial y ambiental. OBJETIVOS Microbiol. 2 42–54. 10.3934 / microbial.2016.1.42

Anupama, Ravindra P. (2000). Alimentos de valor añadido: proteína unicelular. Biotecnol. Adv. 18 459–479. 10.1016 / S0734-9750 (00) 00045-8 [ PubMed ]

Adedayo MR, Ajiboye EA, Akintunde JK, Odaibo A. (2011). Proteínas unicelulares: como potenciador nutricional. Adv. Apl. Sci. Res. 2 396–409.

Ma Y.-M., Liang X.-A., Zhang H.-C., Liu R. (2016). Pentapéptido citotóxico y antibiótico cíclico de un aspergillus tamarii endofítico de Ficus carica . J. Agric. Food Chem. 64 3789–3793. 10.1021 / acs. jafc.6b01051 [ PubMed ]

Patelski P., Berlowska J., Dziugan P., Pielech-Przybylska K., Balcerek M., Dziekonska U., et al. (2015). Utilisation of sugar beet bagasse for the biosynthesis of yeast SCP. J. Food Eng. 67 32–37. 10.1016/j.jfoodeng. 2015.03.031 [Cross Ref ]

Linko Y.-Y., Javanainen P., Linko S. (1997). Biotecnología de la panificación. Tendencias Alimentaria Sci. Tecnol. 81 339–344. 10.1016 / S0924-2244 (97) 01066-2

Takagi H., Shima J. (2015). “Tolerancia al estrés de la levadura de panadería durante los procesos de panificación”, en Stress Biology of Yeasts and Fungi eds Takagi H., Kitagaki H., editores. (Tokio: Springer;) 23–42. 10.1007 / 978-4-431-55248-2-2

Degré R., Edwards G., Zhang Z. (2008). Nueva preparación de levadura con vitamina D2, un método para producir lo mismo y su uso. US 2008/0138469 .

Lipkie TE, Ferruzzi M., Weaver CM (2016). La bioaccesibilidad de la vitamina D del pan enriquecido con levadura tratada con rayos UV es menor que el pan enriquecido con vitamina D2 cristalina y leche bovina. FASEB J 30 918 .

Padilla B., Gil J. V., Manzanares P. (2016). Past and future of non-Saccharomyces yeasts: from spoilage microorganisms to biotechnological tools for improving wine aroma complexity. Front. Microbiol. 7:411 10.3389/fmicb.2016.00411 [PMC free article] [Pub-Med] [Cross Ref ]

Sauer M. (2016). Industrial production of acetone and butanol by fermentation-100 years later. FEMS Microbiol. Lett. 363:fnw134 10.1093/femsle/fnw134 [PMC free article] [PubMed] [Cross Ref ]

Belda I., Ruiz J., Navascués E., Marquina D., Santos A. (2016). Mejora de la liberación de tiol aromático a través de la selección de levaduras con mayor actividad de β-liasa. En t. J. Comida. Microbiol. 225 1–8.10.1016 / j.ijfoodmicro.2016.03.001 [ PubMed ]

Tofalo R., Perpetuini G., Di Gianvito P., Arfelli G., Schirone M., Corsetti A., et al. (2016). Caracterización de levaduras floculantes especializadas para mejorar la fermentación de los vinos espumosos. J. Appl. Microbiol. 120 1574-1584. 10.1111 / jam.13113 [ PubMed ]

Satish K. R., Kanmani P., Yuvaraj N., Paari K. A., Pattukumar V., Arul V. (2013). Traditional In dian fermented foods: a rich source of lactic acid bacteria. Int. J. Food. Sci. Nutr. 64 415–428.10.3109/09637486.2012.746288 [PubMed] [Cross Ref ]

Mokoena MP, Mutanda T., Olaniran AO (2016). Perspectivas sobre el potencial probiótico de las bacterias del ácido láctico de los alimentos y bebidas fermentadas tradicionales africanas. Comida Nutr. Res. 60 : 29630 10.3402 / fnr.v60.29630 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Prasad J., Gill H., Smart J., Gopal PK (2000). Selección y caracterización de cepas de Lactobacillus y Bifidobacterium para su uso como probióticos. En t. Lechería J. 8 993–1002. 10.1016 / S0958-6946 (99) 00024-2

Gawkowski D., Chikindas ML (2016). Bebidas probióticas no lácteas: el siguiente paso en la salud humana. Benef. Microbios 4 127–142. 10.3920 / BM2012.0030 [ PubMed ]

Enujiugha VN, Badejo AA (2017). Potenciales probióticos de bebidas a base de cereales. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 57 790–804. 10.1080 / 10408398.2014.930018 [ PubMed ]

Omemu A. M., Akpan I., Bankole M. O., Teniola O. D. (2005). Hydrolysis of raw tuber starches by amylase of Aspergillus niger AM07 isolated from the soil. Afr. J. Biotechnol. 4 19–25.

Djekrif-Dakhmouche S., Gheribi-Aoulmi Z., Meraihi Z., Bennamoun L. (2006). Aplicación de un diseño estadístico a la optimización del medio de cultivo para la producción de α-amilasa por Aspergillus niger ATCC 16404 cultivado en polvo de residuos de naranja. J. Food Eng. 73 190–197. 10.1016 / j.jfoodeng. 2005.01.021

Adejuwon AO, Oluduro AO, Agboola FK, Olutiola PO, Burkhardt BA, Segal SJ (2015). Expresión de α-amilasa por Aspergillus niger : efecto de la fuente de nitrógeno del medio de crecimiento. Adv. Biosci. Bioeng. 3 12–19.

Ploss TN, Reilman E., Monteferrante CG, Denham EL, Piersma S., Lingner A., et al. (2016). Homogeneidad y heterogeneidad en la producción de amilasa por Bacillus subtilis en diferentes condiciones de crecimiento. Microbios Hecho de la célula. 15 57 10.1186 / s12934-016-0455-1 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Salman T., Kamal M., Ahmed M., Siddiqa S. M., Khan R. A., Hassan A. (2016). Medium optimization for the production of amylase by Bacillus subtilis RM16 in Shake-flask fermentation. Pak. J. Pharm. Sci. 29 439–444. [PubMed]

Rodrigues R. C., Fernandez-Lafuente R. (2010). Lipase from Rhizomucor miehei as a biocatalyst in fats and oils modification. J. Mol. Catal. B Enzym. 66 15–32. 10.1016/j.molcatb.2010.03.008 [Cross Ref ]

Messias JM, da Costa BZ, Lima VMG, Giese EC, Dekker RFH, Barbosa AM (2011). Lipasas microbianas: producción, propiedades y aplicaciones biotecnológicas. Ciênc. Exatas Tecnol. 32 213–234. 10.5433 / 1679-0375.2011v32n2p213

Sharma R., Chisti Y., Banerjee U. C. (2001). Production, purification, characterization, and applications of lipases. Biotechnol. Adv. 19 627–662. 10.1016/S0734-9750(01)00086-6 [PubMed] [Cross Ref ]

Andersen T., Strand BL, Formo K., Alsberg E., Christensen BE (2012). “Los alginatos como biomateriales en ingeniería de tejidos”, en Química de carbohidratos: enfoques químicos y biológicos ed. Rauter AP, editor. (Cambridge: The Royal Society of Chemistry;) 227–258. 10.1039 / 9781849732765-00227

Ismail A.-M., Abo-Elmagd H., Housseiny MM (2016). Una pectinasa clarificadora de jugo segura de Trichoderma viride EF-8 utilizando pieles de cebolla egipcia. J. Genet. Ing. Biotecnol. 14 153-159. 10.1016 / j.jgeb.2016.05.001

Mateo C., Palomo J. M., Fernandez-Lorente G., Guisan J. M., Fernandez-Lafuente R. (2007). Improvement of enzyme activity, stability and selectivity via immobilization techniques. ıEnzyme Microb. Technol. 40 1451–1463. 10.1016/j.enzmictec. 2007.01.018 [Cross Ref ]

Sheldon R. A. (2007). Enzyme immobilization: the quest for optimum performance. Adv. Synth. Catal. 349 1289–1307. 10.1002/adsc.200700082 [Cross Ref ]

Carroll AL, Desai SH, Atsumi S. (2016). Producción microbiana de aromas y compuestos aromáticos. Curr. Opin. Biotecnol. 37 8–15. 10.1016 / j.copbio. 2015.09.003 [ PubMed ]

Lesage-Meessen L., Lomascolo A., Bonnin E., Thibault J.-F., Buleon A., Roller M., et al. (2002). Un proceso biotecnológico que involucra hongos filamentosos para producir vainillina cristalina natural a partir de salvado de maíz. Apl. Biochem. Biotecnol. 102 141-153. 10.1385 / ABAB: 102-103: 1-6: 141 [PubMed ]

Saerens S., Swiegers J. H. (2016). Enhancement of Coffee Quality and Flavor by Using Pichia kluyveri Yeast Starter Culture for Coffee Fermentation. US 20160058028 A1.

Nielsen DR, Yoon SH, Yuan CJ, Prather KL (2010). Ingeniería metabólica de la biosíntesis de acetoína y meso-2,3-butanodiol en E. coli . Biotecnol. J. 5 274– 284. 10.1002 / biot.200900279 [ PubMed ]

Wilson MJ, Jackson TA (2013). Avances en la comercialización de bionematicidas. BioControl 58 715– 722. 10.1007 / s10526-013-9511-5

McRae CF (1988). Enfoques clásicos e inundativos para el control biológico de malezas en comparación. Planta Prot. Cuarto de galón. 3 124–127.

Duke SO, Scheffler BE, Boyette CD, Dayan FE (2015). Biotecnología en control de malezas. Enciclopedia Kirk-Othmer de Tecnología Química. Nueva York, Nueva York: John Wiley & Sons, Inc. 10.1002 / 0471238961.herbduke.a01.pub2

Sarwar M. (2015a). Biopesticides: an effective and environmental friendly insect-pests inhibitor line of action. Int. J. Eng. Adv. Res. Technol. 1 10–15.

Khan MA, Paul B., Ahmad W., Paul S., Aggarwal C., Khan Z., y otros. (2016). “Potencial de Bacillus thuringiensis en el manejo de plagas de lepidópteros perniciosas”, en Plant, Soil and Microbes eds Hakeem KR, Akhtar MS, editores. (Ciudad de Nueva York, NY: Springer International Publishing;) 277–301. 10.1007 / 978-3-319-29573-2_13

Popham HJR, Nusawardani T., Bonning BC (2016). “Introducción al uso de baculovirus como insecticidas biológicos”, en Baculovirus e Insect Cell Expression Protocols ed. Murhammer DW, editor. (Nueva York, NY: Springer;) 383–392. 10.1007 / 978-1- 4939-3043-2_19 [ PubMed ]

Sarwar M. (2015b). Microbial insecticides- an ecofriendly effective line of attack for insect pests management. Int. J. Eng. Adv. Res. Technol. 1 4–9.

Mendoza AR, Kiewnick S., Sikora RA (2008). Actividad in vitro de Bacillus firmus contra el nematodo excavador Radopholus similis, el nematodo nudo de la raíz Meloidogyne incognita y el nematodo del tallo Ditylenchus dipsaci . Biocontrol. Sci. Tecnol. 18 377–389. 10.1080 / 09583150801952143

Twomey U., Warrior P., Kerry BR, Perry RN (2000). Efectos del nematicida biológico, DiTera, en la eclosión de Globodera rostochiensis y G. pallida . Nematología 2 355-362. 10.1163 / 156854100509114

Davies KG, Rowe J., Manzanilla-López R., Opperman CH (2011). Reevaluación del ciclo de vida de la bacteria nematodo-parasitaria Pasteuria penetrans en nematodos de nudo de raíz. Meloidogyne spp. Nematologica 13 825-835. 10.1163 / 138855410X552670

Druzhinina IS, Seidl-Seiboth V., Herrera-Estrella A., Horwitz BA, Kenerley CM, Monet E., et al. (2011). Trichoderma : la genómica del éxito oportunista. Nat. Rev. Microbiol. 9 749–759. 10.1038 / nrmicro2637 [ PubMed ]

Jones EE, Rabeendran N., Stewart A. (2014). Biocontrol de la infección por Sclerotinia sclerotiorum del repollo por C. minitans y Trichoderma spp. Biocontrol. Sci. Tecnol. 24 1363–1382. 10.1080 / 09583157.2014.940847

Jones EE, Bienkowski DA, Stewart A. (2016). La importancia de la tolerancia del rango de potencial hídrico como factor limitante en Trichoderma spp. Control biológico de Sclerotinia sclerotiorum . Ana. Apl. Biol. 168 41–51. 10.1111 / aab.12240

Saravanakumar K., Yu C., Dou K., Wang M., Li Y., Chen J. (2016). Synergistic effect of Trichoderma-derived antifungal metabolites and cell wall degrading enzymes on enhanced biocontrol of Fusarium oxysporum f. sp. Cucumerinum. Biol. Control. 94 37– 46. 10.1016/j.biocontrol.2015.12.001 [Cross Ref ]

Carrero-Carrón I., Trapero-Casas JL, Olivares-García C., Monte E., Hermosa R., Jiménez-Díaz RM (2016). Trichoderma asperellum es eficaz para el control biológico del marchitamiento por Verticillium en olivos causado por el patotipo desfoliante de Verticillium dahliae . Crop Prot. 88 45–52. 10.1016 / j.cropro. 2016.05.009

Khaledi N., Taheri P. (2016). Mecanismos de biocontrol de Trichoderma harzianum contra la pudrición del carbón de soya causada por Macrophomina phaseolina . J. Plant Prot. Res. 56 21–31. 10.1515 / jppr-2016-0004

Sahebani N., Hadavi N. (2008). Biological control of the root-knot nematode Meloidogyne javanica by Trichoderma

harzianum. Soil Biol. Biochem. 40 2016– 2020. 10.1016/j.soilbio.2008.03.011 [Cross Ref ]

Feyisa B., Lencho A., Selvaraj T., Getaneh G. (2016). Evaluación de algunos productos botánicos y Trichoderma

harzianum contra nematodos de nudo de la raíz ( madera de Chit de Meloidogyne incognita (Kofoid y White)) en tomate. J. Entomol. Nematol. 8 11–18. 10.5897 / JEN2015.0145

Sokhandani Z., Moosavi MR, Basirnia T. (2016). Concentraciones óptimas de Trichoderma longibrachiatum y cadusafos para controlar Meloidogyne javanica en plantas de calabacín. J. Nematol. 48 54–63. [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Walder F., Boller T., Wiemken A., Courty P.-E. (2016). Regulación de la absorción de fosfato de las plantas en redes micorrízicas comunes: papel de los transportadores de fosfato fúngico intrarrádicos. Señal de Planta. Behav. 11 : e1131372 10.1080 / 15592324.2015.1131372 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Lugtenberg B., Kamilova F. (2009). Rizobacterias promotoras del crecimiento de las plantas. Annu. Rev. Microbiol. 63 541–556. 10.1146 / annurev.micro. 62.081307.162918 [ PubMed ]

Sauer M., Porro D., Mattanovich D., Branduardi P. (2008). Microbial production of organic acids: expanding the markets. Trends Biotechnol. 26 100–108. 10.1016/j.tibtech.2007.11.006 [PubMed] [Cross Ref ]

Moon HG, Jang Y.-S., Cho C., Lee J., Binkley R., Lee SY (2016). Cien años de fermentación del butanol clostridial. FEMS Microbiol. Letón. 363 fnw001 10.1093 / femsle / fnw001 [ PubMed ]

Holm-Nielsen JB, Al Seadi T., Oleskowicz-Popiel P. (2009). El futuro de la digestión anaerobia y la utilización del biogás. Biorour. Tecnol. 100 5478–5484. 10.1016 / j.biortech.2008.12.046 [ PubMed ]

Ennouri H., Miladi B., Díaz SZ, Guelfo LAF, Solera R., Hamdi M., et al. (2016). Efecto del tratamiento térmico previo sobre la producción de biogás y el equilibrio de las comunidades microbianas durante la digestión anaeróbica de lodos activados de residuos urbanos e industriales. Biorour. Tecnol. 214 184– 191. 10.1016 / j.biortech.2016.04.076 [ PubMed ]

Mulat DG, Jacobi HF, Feilberg A., Adamsen APS, Richnow H.-H., Nikolausz M. (2016). Cambio de los regímenes de alimentación para demostrar la producción flexible de biogás: efectos sobre el rendimiento del proceso, la estructura de la comunidad microbiana y las vías de metanogénesis. Apl. Reinar. Microbiol. 82 438–449. 10.1128 / AEM.02320-15 [Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Suksong W., Kongjan P., Prasertsan P., Imai T., O-Thong S. (2016). Optimización y análisis de la comunidad

microbiana para la producción de biogás a partir de residuos de residuos sólidos de la industria de la planta de aceite de palma mediante digestión anaeróbica en estado sólido. Biorour. Tecnol. 214 166–174. 10.1016 / j.biortech.2016.04.077 [ PubMed ]

Schlüter A., Bekel T., Diaz N. N., Dondrup M., Eichenlaub R., Gartemann K.-H., et al. (2008). The metagenome of a biogas-producing microbial community of a production-scale biogas plant fermenter analysed by the 454-pyrosequencing technology. J. Biotechnol. 136 77–90. 10.1016/j.jbiotec. 2008.05.008 [PubMed] [Cross Ref ]

Boada L., Sánchez, J., Wen, Y. Indagación exploratoria in vitro de la capacidad degradadora de la cepa comercial Pleurotus ostreatus sobre dos concentraciones de petróleo crudo. NOVA. 2018; 16 (30): 31-35.

Liao JC, Mi L., Pontrelli S., Luo S. (2016). Impulsando el futuro: ingeniería microbiana para la producción

de biocombustibles sostenibles. Nat. Rev. Microbiol. 14 288–304. 10.1038 / nrmicro.2016.32 [ PubMed ]

Meijnen J.-P., Randazzo P., Foulquié-Moreno MR, Brink JVD, Vandecruys P., Stojiljkovic M., et al. (2016). Análisis poligénico y mejora dirigida del rasgo complejo de alta tolerancia al ácido acético en la levadura Saccharomyces cerevisiae . Biotecnol. Biocombustibles 9 5 10.1186 / s13068-015-0421-x [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Campuzano, S., Urquijo, L., Valderrama, J. Evaluación de la actividad celulolítica y quitinolítica de hongos filamentosos aislados de rizósfera de cultivos de papa para control de rhizoctonia solani. NOVA. 2017; 15 (28): 45 - 55

Kuyper M., Hartog MMP, Toirkens MJ, Almering MJH, Winkler AA, van Dijken JP, et al. (2005). Ingeniería metabólica de una cepa que expresa xilosa-isomerasa para una rápida fermentación anaeróbica de xilosa. FEMS Levadura Res. 5 399–409. 10.1016 / j.femsyr.2004.09.010 [ PubMed ]

Losordo Z., McBride J., Van Rooyen J., Wenger K., Willies D., Froehlich A., y otros. (2016). Costo competitivo de la producción de etanol de segunda generación a partir de hemicelulosa en una biorrefinería de caña de azúcar brasileña. Biocombustible Bioprod. Bior. 10 589–602. 10.1002 / bbb.1663

McIntosh S., Zhang Z., Palmer J., Wong H.-H., Doherty W. O. S., Vancov T. (2016). Pilot-scale cellulosic ethanol production using eucalyptus biomass pre-treated by dilute acid and steam explosion. Biofuel Bioprod. Bior. 10 346–358. 10.1002/bbb.1651 [Cross Ref ]

Appels L., Baevens J., Degrève J., Dewil R. (2008). Principios y potencial de la digestión anaerobia de lodos activados por residuos. Prog. Combustible de energía. Sci. 34 755–781. 10.1016 / j.pecs.2008.06.002

Wirth R., Kovacs E., Maroti G., Bagi Z., Rakhely G., Kovacs KL (2012). Caracterización de una comunidad microbiana productora de biogás mediante secuenciación de ADN de próxima generación de lectura corta. Biotecnol. Biofuels 5 : 41 10.1186 / 1754- 6834-5-41 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Chojnacka A., Szczesny y otros. Datos notables sobre una comunidad microbiana productora de metano que procesa efluentes ácidos de la fermentación de melaza de remolacha azucarera. PLoS ONE 10 : e0128008 10.1371 / journal.pone.0128008 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Chouari R., Le PD, Daegelen P., Ginestet P., Weissenbach J., Sghir A. (2005). Novedosos grupos predominantes de arqueas y bacterias revelados por el análisis molecular de un digestor de lodos anaeróbico. Reinar. Microbiol. 7 1104–1115. 10.1111 / j.1462- 2920.2005.00795.x [ PubMed ]

Satpathy P., Steinigeweg S., Cypionka H., Engelen B. (2016). Different substrates and starter inocula govern microbial community structures in biogas reactors. Environ. Technol. 37 1441–1450. 10.1080/09593330.2015.1118559 [PubMed] [Cross Ref ]

Goswami R., Chattopadhyay P., Shome A., Banerjee SN, Chakraborty AK, Mathew AK, y otros. (2016). Una visión general de los mecanismos físico-químicos de la producción de biogás por las comunidades microbianas: un paso hacia la gestión sostenible de los desechos. 3 Biotech 6 72 10.1007 / s13205-016-0395-9 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Adham NZ (2002). Intentos de mejorar la fermentación del ácido cítrico por Aspergillus niger en medio de remolacha y melaza. Biorour. Tecnol. 84 97–100. 10.1016 / S0960-8524 (02) 00007-X [ Pub- Med ]

Ikram-ul H., Ali S., Qadeer MA, Iqbal J. (2004). Producción de ácido cítrico por mutantes seleccionados de Aspergillus niger a partir de melaza de caña. Biorour. Tecnol. 93 125–130. 10.1016 / j.biortech. 2003.10.018 [ PubMed ]

Wang L., Cao Z., Hou L., Yin L., Wang D., Gao Q. y otros. (2016). Los roles opuestos de agdA y glaA en la producción de ácido cítrico en Aspergillus niger . Apl. Microbiol. Biotecnol. 100 5791-5803. 10.1007 / s00253-016-7324-z [ PubMed ]

Gao C., Ma C., Xu P. (2011). Rutas biotecnológicas basadas en la producción de ácido láctico a partir de biomasa. Biotecnol. Adv. 29 930–939. 10.1016 / j.biotechadv.2011.07.022 [ PubMed ]

Hofvendahl K., Hahn-Hägerdal B. (2000). Factores que afectan la producción fermentativa de ácido láctico a partir de recursos renovables. Enzyme Microb. Tecnol. 26 87–107. 10.1016 / S0141-0229 (99) 00155-6 [ PubMed ]

Papagianni M. (2004). Fungal morphology and metabolite production in submerged mycelia processes. Biotechnol. Adv. 22 189–259. 10.1016/j.biotechadv. 2003.09.005 [PubMed] [Cross Ref ]

Fu YQ, Yin LF, Zhu HY, Jiang R., Li S., Xu Q. (2014). Efectos de las características de los pellets en la fermentación del ácido L-láctico por R. oryzae: morfología de los pellets, diámetro, densidad y estructura interior. Apl. Biochem. Biotecnol. 174 2019-2030. 10.1007 / s12010-014-1146-1 [ PubMed ]

Saitoh S., Ishida N., Onishi T., Tokuhiro K., Nagamori E., Kitamoto K., et al. (2005). Genetically engineered wine yeast produces a high concentration of L-lactic acid of extremely high optical purity. Appl. Environ. Microbiol. 71 2789–2792. 10.1128/ AEM.71.5.2789-2792 [PMC free article] [PubMed] [Cross Ref ]

Valli M., Sauer M., Branduardi P., Borth N., Porro D., Mattanovich D. (2006). Mejora de la producción de ácido láctico en Saccharomyces cerevisiae por clasificación celular para alto pH intracelular. Apl. Reinar. Microbiol. 72 85492–85499. 10.1128 / AEM.00683-06 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Biebl H., Menzel K., Zeng A.-P., Deckwer W.-D. (1999). Producción microbiana de 1,3-propanodiol. Apl. Microbiol. Biotecnol. 52 289–297. 10.1007 / s002530051523 [ PubMed ]

Przystałowska H., Zeyland J., Szymanowska- Powałowska D., Szalata M., Słomski R., Lipiñski D. (2015). Producción de 1,3-propanodiol por Escherichia coli recombinante que contiene genes de bacterias patógenas. Microbiol. Res. 171 1–7. 10.1016 / j.micres.2014.12.007 [ PubMed ]

Hasan F., Shah AA, Hameed A. (2006). Aplicaciones industriales de lipasas microbianas. Enzima Microb. Tecnol. 39 235–251. 10.1016 / j.enzmictec. 2005.10.016

Beffa T., Blanc M., Marilley L., Fischer JL, Lyon P.-F., Aragno M. (1996). “Diversidad microbiana taxonómica y metabólica durante el compostaje”, en The Science of Composting eds. Bertoldi M., Sequi P., Lemmes B., Papi T., editores. (Dordrecht: Springer;) 149-161. 10.1007 / 978-94-009-1569-5-16

Tiquia SM, Wan HC, Tam NFY (2002). Dinámica de la población microbiana y actividades enzimáticas durante el compostaje. Compost sci. Util. 10 150-161. 10.1080 / 1065657X.2002.10702075

Hassen A., Belguith K., Jedidi N., Cherif A., Cherif M., Boudabous A. (2001). Caracterización microbiana durante el compostaje de residuos sólidos municipales. Biorour. Tecnol. 80 217-225. 10.1016 / S0960-8524 (01) 00065-7 [ PubMed ]

Jamie A., Alshami AS, Maliabari ZO, Ateih MA, Al Hamouz OCS (2016). Inmovilización y actividad catalítica mejorada de la lipasa en MWCNT modificado para el tratamiento de aguas residuales oleosas. Reinar. Prog. Sostener. Energía 35 1441–1449.10.1002 / ep.12375

Durán N., Esposito E. (2000). Aplicaciones potenciales de enzimas oxidativas y compuestos de tipo fenoloxidasa en aguas residuales y tratamiento de suelos: una revisión. Apl. Catal. B Environ. 28 83–99. 10.1016 / S0926-3373 (00) 00168-5

Tatsumi K., Wada S., Ichikawa H. (1996). Eliminación de clorofenoles de las aguas residuales mediante peroxidasa de rábano picante inmovilizada. Biotecnol. Bioeng. 51 126–130. 10.1002 / (SICI) 1097-0290 (19960705) 51: 1 <126 :: AID-BIT15> 3.0.CO; 2-O [ PubMed ]

Tong Z., Qingxiang Z., Hui H., Qin L., Yi Z., Min Q. (1998). Estudio cinético sobre la eliminación de fenol tóxico y clorofenol de las aguas residuales mediante peroxidos de rábano. Quemosfera 37 1571- 1577. 10.1016 / S0045-6535 (98) 00140-4

Akay G., Erhan E., Keskinler B., Algur OF (2002). Eliminación de fenol de las aguas residuales utilizando enzimas inmovilizadas por membrana Parte II. Filtración de flujo cruzado. J. Membr. Sci. 206 61–68. 10.1016 / S0376-7388 (01) 00626-3

Kampmann M., Boll S., Kossuch J., Bielecki J., Uhl S., Kleiner B., y otros. (2014). Inmovilización eficiente de la tirosinasa de hongos utilizando células enteras de Agaricus bisporus y su aplicación para la degradación del bisfenol A. Water Res. 57 295–303. 10.1016 / j.watres.2014.03.054 [ PubMed ]

Rama R., Mougin C., Boyer FD, Kollmann A., Malosse C., Sigoillot JC (1998). Biotransformación de benzo [a] pireno en un reactor a escala de banco utilizando lacasa de Pycnoporus cinnabarinus . Biotecnol. Letón. 20 1101–1104. 10.1023 / A:1005387016390

Hofrichter M., Vares K., Scheibner K., Galkin S., Sipila J., Hatakka A. (1999). Mineralización y solubilización de lignina sintética por las peroxidasas de manganeso de Nematoloma frowardii y Phlebia radiata . J. Biotechnol. 67 217–228. 10.1016 / S0168-1656 (98) 00180-1

Kunz A., Reginatto V., Durán N. (2001). Tratamiento combinado de efluentes textiles utilizando la secuencia Phanerochaete chrysosporium-ozone. Quemosfera 44 281–287. 10.1016 / S0045-6535 (00) 00165-X [ PubMed ]

Pendyala B., Chaganti S. R., Lalman J. A., Heath D. D. (2016). Optimizing the performance of microbial fuel cells fed a combination of different synthetic organic fractions in municipal solid waste. Wast Manag. 49 73–82. 10.1016/j.wasman.2015.12.032 [PubMed] [Cross Ref ]

Simpson DR (2008). Procesos de biopelículas en la purificación de agua con carbón biológicamente activo. Agua res. 42 2839–2848. 10.1016 / j.watres. 2008.02.025 [ PubMed ]

Brown J., Lauderdale C. (2006). Destrucción eficiente y simultánea de múltiples contaminantes del agua potable mediante filtración biológica. Agua de Florida. J. 3 28-30. 134. Philip S., Keshavarz T., Roy I. (2007). Polyhydroxyalkanoates: biodegradable polymers with a range of applications. J. Chem. Technol. Biotechnol. 82 233–247. 10.1002/jctb.1667 [Cross Ref ]

Figueiredo TVB, Campos MI, Sousa LS, Silva JR, Druzian JI (2014). Producción y distribución de polihidroxialcanoatos obtenidos por fermentación de glicerina residual de biodiesel. Quím. Nova 37 1111– 1117. 10.5935 / 0100-4042.20140183

Mohanty AK, Misra M., Hinrichsen G. (2000). Biofibras, polímeros biodegradables y biocompuestos: una visión general. Macromol. Mater. Ing. 276- 277 1–24. 10.1002 / (SICI) 1439-2054 (20000301) 276: 1

Boyer LR, Feng W., Gulbis N., Hadju K., Harrison RJ, Jeffries P., y otros. (2016). El uso de hongos micorrízicos arbusculares para mejorar la producción de fresas en el sustrato de fibra de coco. Frente. Planta sci. 7 : 1237 10.3389 / fpls.2016.01237 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Gabriele M., Gerardi C., Longo V., Lucejko J., Degano I., Pucci L., et al. (2016). El impacto de los hongos micorrízicos en la producción de vino tin to Sangiovese : compuestos fenólicos y propiedades antioxidantes. LWT Food Sci. Tecnol. 72 310–316.10.1016 / j.lwt.2016.04.044

Köhl L., Lukasiewicz CE, van der Heijden MGA (2016). Establecimiento y efectividad de hongos micorrízicos arbusculares inoculados en suelos agrícolas. Medio ambiente de células vegetales. 39 136–146. 10.1111 / pce.12600 [ PubMed ]

Smith SE, Read D. (2008). Simbiosis micorrícica 3ra ed. San Diego, CA: Academic Press.

Lanfranco L., Bonfante P., Género A. (2016). La interacción mutualista entre plantas y hongos micorrízicos arbusculares. Microbiol. Espectr. 4 : FUNK- 0012-2016 10.1128 / microbiolspec.FUNK-0012- 2016 [ PubMed ]

Rillig MC, MA Sosa-Hernández, Roy J., Aguilar- Trigueros CA, Vályi K., Lehmann A. (2016). Hacia una tecnología integrada de las micorrizas: aprovechando las micorrizas para una intensificación sostenible en la agricultura. Frente. Planta sci. 7 : 1625 10.3389 / fpls.2016.01625 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Walker T., Johnson PH, Moreira LA, Iturbe-Ormaetxe I., Frentiu FD, McMeniman CJ, et al. (2011). La variedad wMel Wolbachia bloquea el dengue e invade las poblaciones enjauladas de Aedes aegypti . Naturaleza 476 450–453. 10.1038 / nature10355 [PubMed ]

Cook PE, McMeniman CJ, O’Neill SL (2008). Modificación de la estructura de edad de la población de insectos para controlar enfermedades transmitidas por vectores. Adv. Exp. Medicina. Biol. 627 126–140. 10.1007 / 978-0-387-78225-6-11 [ PubMed ]

Turley AP, Moreira LA, O’Neill S., McGraw EA (2009). La infección por Wolbachia reduce el éxito de la alimentación de sangre en el mosquito de la fiebre del dengue, Aedes aegypti . PLoS Negl. Trop. Dis. 3 : e516 10.1371 / journal.pntd.0000516 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Bian G., Xu Y., Lu P., Xie Y., Xi Z. (2010). La bacteria endosimbiótica Wolbachia induce resistencia al virus del dengue en Aedes aegypti . PLoS Pathog. 6 : e1000833 10.1371 / journal.ppat.1000833 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

McMeniman CJ, Lane RV, Cass BN, Fong AWC, Sidhu M., Wang Y.-F., y otros. (2009). Introducción estable de una infección por Wolbachia que acorta la vida en el mosquito Aedes aegypti . Science 323 141–144. 10.1126 / science.1165326 [ PubMed ]

Gill SS, Cowles EA, Pietrantonio PV (1992). El modo de acción de las endotoxinas de Bacillus thuringiensis . Annu. Rev. Entomol. 37 615–636. 10.1146 / annurev.en.37.010192.003151 [ PubMed ]

Mohiddin A., Lasim AM, Zuharah WF (2016). Susceptibilidad de Aedes albopictus desde áreas de brotes de dengue a temephos y Bacillus thuringiensis subsp. israelensis. Asia Pac. J. Trop. Biomed. 6 295– 300. 10.1016 / j.apjtb.2016.01.006

Setha T., Chantha N., Benjamin S., Socheat D. (2016). Bacterial larvicide, Bacillus thuringiensis israelensis strain AM 65-52 water dispersible granule formulation impacts both dengue vector, Aedes aegypti (L.) population density and disease transmission in Cambodia. PLoS Negl. Trop. Dis. 10:e0004973 10.1371/journal.pntd.0004973 [PMC free article] [PubMed] [Cross Ref ]

Castañeda, E., Sánchez, L. Evaluación del crecimiento de cuatro especies del género Bacillus sp., primer paso para entender su efecto biocontrolador sobre Fusarium sp. NOVA. 2016; 14 (26): 53-65

Paris M., Tetreau G., Laurent F., Lelu M., Despres L., David J.-P. (2011). Persistence of Bacillus thuringiensis israelensis (Bti) in the environment induces resistance to multiple Bti toxins in mosquitoes. Pest Manag. Sci. 67 122–128. 10.1002/ps.2046 [PubMed] [Cross Ref ]

Paris M., Melodelima C., Coissac E., Tetreau G., Reynaud S., David J.-P., et al. (2012). Transcription profiling of resistance to Bti toxins in the mosquito Aedes aegypti using next-generation sequen cing. J. Invertebr. Pathol. 109 201–208. 10.1016/j. jip.2011.11.004 [PubMed] [Cross Ref ]

Wu S., Wu W., Zhu X., Liu Z., Rebeca C.-L., Fu T., y col. (2016). Respuesta fisiológica y bioquímica de la tolerancia de Aedes aegypti a Bacillus thuringiensis . Biocontrol Sci. Tecnol. 26 227–238. 10.1080 / 09583157.2015.1089216

Durbin AP (2016). Una vacuna contra el dengue. Cell 166 1 10.1016 / j.cell.2016.06.036 [ PubMed ]

Pitisuttithum P., Bouckenooghe A. (2016). La primera vacuna autorizada contra el dengue: una herramienta

importante para las estrategias preventivas integradas contra la infección por el virus del dengue. Experto Rev. Vacunas. 15 795–798. 10.1080 / 14760584.2016.1189331 [ PubMed ]

Nabel GJ (2013). Diseñando las vacunas del mañana. N. Engl. J. Med. 368 551–560. 10.1056 / NEJMra1204186

[ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Bobbala S., Hook S. (2016). ¿Existe una formulación óptima y una estrategia de administración para vacunas de subunidades? Farmacéutico Res. 33 2078–2097. 10.1007 / s11095-016-1979-0 [ Pub- Med ]

Cutts FT, Franceschi S., Goldie S., Castellsague X., de Sanjose S., Garnett G., et al. (2007). Virus del papiloma humano y vacunas contra el VPH: una revisión. Toro. Organismo Mundial de la Salud. 85 719–726. 10.1590 / S0042-96862007000900018 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Reed SG, Bertholet S., Coler RN, Friede M. (2009). Nuevos horizontes en adyuvantes para el desarrollo de vacunas. Tendencias Immunol. 30 23–32. 10.1016 / j.it.2008.09.006 [ PubMed ]

Gillison ML, Chaturvedi AK, Lowy DR (2008). Vacunas profilácticas contra el VPH y la posible prevención de cánceres no cúrcicos en hombres y mujeres. Cáncer 113 3036–3046. 10.1002 / cncr.23764 [PubMed ]

Roden R., Wu T.-C. (2006). ¿Cómo afectarán las vacunas contra el VPH al cáncer cervical? Nat. Rev. Cancer 6 753-763. 10.1038 / nrc1973 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Astronomo RD, Burton DR (2010). Vacunas de hidratos de carbono: ¿desarrollar soluciones dulces para situaciones pegajosas? Nat. Rev. Droga. Discov. 9 308–324. 10.1038 / nrd3012 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Pifferi C., Berthet N., Renaudet O. (2017). Cyclopeptide scaffolds in carbohydrate-based synthetic vaccines. Biomater. Sci. 5 953–965. 10.1039/C7BM00072C [PubMed] [Cross Ref ]

Keitel WA, Bond NL, Zahradnik JM, Cramton TA, Robbins JB (1994). Respuestas clínicas y serológicas después de la inmunización primaria y de refuerzo con las vacunas de polisacáridos capsulares de Salmonella typhi Vi. Vacuna 12 195–199. 10.1016 / 0264-410X (94) 90194-5 [ PubMed ]

King WJ, MacDonald NE, Wells G., Huang J., Allen U., Chan F., y otros. (1996). Respuesta de anticuerpos total y funcional a una vacuna de polisacáridos meningocócicos cuadrivalentes en niños. J. Pediatr. 128 196–202. 10.1016 / S0022-3476 (96) 70389-X [ PubMed ]

Nishat S., Andreana PR (2016). Vacunas totalmente basadas en carbohidratos: un campo emergente para respuestas inmunes específicas y selectivas. Pharmaceutics 8 7 10.3390 / pharmaceutics8010007 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Knuf M., Kowalzik F., Kieninger D. (2011). Efectos comparativos de las proteínas portadoras sobre la respuesta inmunológica inducida por la vacuna. Vacuna 29 4881–4890. 10.1016 / j.vaccine. 2011.04.053 [ PubMed ]

Frenck RW, Yeh S. (2012). El desarrollo de la vacuna antineumocócica conjugada 13-valente y su posible uso en adultos. Opinión de los expertos. Biol. El r. 12 63–77. 10.1517 / 14712598.2012.636348 [ PubMed ]

Pichichero M. E. (2013). Protein carriers of conjugate vaccines: characteristics, development, and clinical trials. Hum. Vaccin. Immunother. 9 2505– 2523. 10.4161/hv.26109 [PMC free article] [Pub- Med] [Cross Ref ]

Robinson HL (1997). Vacunas de ácido nucleico: una visión general. Vacuna 15 785-787. 10.1016 / S0264-410X (96) 00249-6 [ PubMed ]

Brouillette M., Doré M., Hébert C., Spooner M.-F., Marchand S., Côté J., et al. (2016). Un nuevo inyector intradérmico biolístico. Ondas de choque 26 25–37. 10.1007 / s00193-013-0464-5

Fynan EF, Wwbster RG, Fuller DH, Haynes JR, Santoro JC, Robinson HL (1993). Vacunas de ADN: inmunizaciones protectoras por inoculación parenteral, mucosa y de pistola génica. Proc. Natl Acad Sci. USA 90 11478–11482. 10.1073 / pnas.90.24.11478 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Rao SS, Gómez P., Mascola JR, Dang V., Krivulka GR, Yu F., y otros. (2006). Evaluación comparativa de tres métodos de administración intramuscular diferentes para la inmunización con ADN en un modelo animal de primate no humano. Vacuna 24 367–373. 10.1016 / j.vaccine.2005.07.072 [ Pub- Med ]

Becker PD, Noerder M., Guzmán CA (2008). Inmunización genética: bacterias como vehículos de entrega de vacunas de ADN. Tararear. Vacunar 4 189–202. 10.4161 / hv.4.3.6314 [ PubMed ]

He Z., Wlazlo AP, Kowalczyk DW, Cheng J., Xiang ZQ, Giles-Daves W., et al. (2000). Vacunas virales recombinantes contra los antígenos E6 y E7 de HPV-16. Virología 270 146-161. 10.1006 / viro.2000.0271 [ PubMed ]

Carter PJ (2006). Potentes terapias de anticuerpos por diseño. Nat. Rev. Immunol. 6 343–357. 10.1038 / nri1837 [ PubMed ]

Corrales, L., Caycedo, L., Gómez, M., Ramos, S., Rodríguez, J. Bacillus spp: una alternativa para la promoción vegetal por dos caminos enzimáticos. NOVA. 2017; 15 (27): 45 - 65

Marasco W. A., Sui J. (2007). The growth and potential of human antiviral monoclonal antibody therapeutics. Nat. Biotechnol. 25 1421–1434. 10.1038/nbt1363 [PubMed] [Cross Ref ]

El grupo de estudio IMpact-RSV (1998). Palivizumab, un anticuerpo monoclonal del virus sincicial respiratorio humanizado, reduce la hospitalización por infección del virus sincitial respiratorio en bebés de alto riesgo. Pediatría 102 3 10.1542 / peds.102.3.531 [ PubMed ]

Kummerfeldt CE (2014). Raxibacumab para el tratamiento del ántrax por inhalación. Infectar. Resistencia a las drogas. 7 101-109. 10.2147 / IDR. S47305 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Baldo BA (2016). “Otros anticuerpos monoclonales terapéuticos aprobados”, en Safety of Biologics

Therapy (Ciudad de Nueva York, NY: Springer International Publishing;) 141–215. 10.1007 / 978-3- 319-30472-4_4

Bajaj M., Schmidt S., Winter J. (2012). Formación de nanopartículas de Se (0) por Duganella sp. y Agrobacterium sp. aislado del suelo cargado de Se del Noreste de Punjab, India. Microbios Hecho de la célula. 11 : 64 10.1186 / 1475-2859-11-64 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Avendaño R., Chaves N., Fuentes P., Sánchez E., Jiménez JI, Chavarría M. (2016). Producción de anopartículas de selenio en Pseudomonas putida KT2440. Sci. Rep. 6 37155 10.1038 / srep37155 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Borghesi A., Stronati M. (2015). Superbugs y antibióticos en el recién nacido. J. Pediatr. Neonat Individuo Medicina. 4 : e040253 10.7363 / 040253

Vázquez E., Villaverde A. (2013). Biofabricación microbiana para nanomedicina: biomateriales, nanopartículas y más. Nanomedicina 8 1895-1898. 10.2217 / nnm.13.164 [ PubMed ]

Rodriguez-Carmona E., Villaverde A. (2010). Nanostructured bacterial materials for innovative medicines. Trends Microbiol. 18 423–430. 10.1016/j. tim.2010.06.007 [PubMed] [Cross Ref ]

Nizet V. (2015). Deteniendo las superbacterias, manteniendo la microbiota. Sci. Transl. Medicina. 7 295ed8 10.1126 / scitranslmed.aab2373 [ PubMed ]

Brito MA, Cordeiro BC (2012). La necesidad de nuevos antibióticos. J. Bras. Patol. Medicina. Laboratorio. 48 247–249. 10.1590 / S1676- 24442012000400002

Chumnanpuen P., Kocharin K., Vongsangnak W. (2016). “Sistemas de expresión de levadura para biotecnología industrial”, en Sistemas de expresión génica en hongos: avances y aplicaciones, parte de la serie Fungal Biology eds Schmoll M., Dattenböck C., editores. (Ciudad de Nueva York, NY: Springer International Publishing;) 227–237. 10.1007 / 978-3-319-27951-0-9

Sanchez-Garcia L., Martín L., Mangues R., Ferrer- Miralles N., Vázquez E., Villaverde A. (2016). Recombinant pharmaceuticals from microbial cells: a 2015 update. Microb. Cell Fact. 15 33 10.1186/ s12934-016-0437-3 [PMC free article] [PubMed] [Cross Ref ]

Ferrer-Miralles N., Domingo-Espín J., Corchero JL, Vázquez E., Villaverde A. (2009). Fábricas de microbios para productos farmacéuticos recombinantes. Microbios Hecho de la célula. 8 : 17 10.1186 / 1475- 2859-8-17 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Borghese R., Brucale M., Fortunato G., Lanzi M., Mezzi A., Valle F., et al. (2016). Producción extracelular de nanopartículas de teluro por la bacteria fotosintética Rhodobacter capsulatus . J. Hazard. Mater. 309 202–209. 10.1016 / j.jhazmat.2016.02.011 [ PubMed ]

Overton T. W. (2014). Recombinant protein production in bacterial hosts. Drug Discov. Today 19 590–601. 10.1016/j.drudis.2013.11.008 [PubMed] [Cross Ref ]

Zhang X., Tervo CJ, Reed JL (2016). Evaluación metabólica de E. coli como biofábrica para productos comerciales. Metab. Ing. 35 64–74. 10.1016 / j.ymben. 2016.01.007 [ PubMed ]

Olmos-Soto J., Contreras-Flores R. (2003). Genetic system constructed to overproduce and secrete proinsulin in Bacillus subtilis. Appl. Microbiol. Biotechnol. 62 369–373. 10.1007/s00253-003-1289-4 [PubMed] [Cross Ref ]

Sandgathe A., Tippe D., Dilsen S., Meens J., Halfar M., Weuster-Botz D., et al. (2003). Production of a human calcitonin precursor with Staphylococcus carnosus: secretory expression and single-step recovery by expanded bed adsorption. Process Biochem. 38 1351–1363. 10.1016/S0032-9592(02)00332-1 [Cross Ref ]

Liu K., Ding X., Deng B., Chen W. (2009). Aislamiento y caracterización de hongos endófitos productores de taxol de Taxus chinensis . J. Ind. Microbiol. Biotecnol. 36 1171–1177. 10.1007 / s10295-009-0598-8 [ PubMed ]

Cano-Garrido O., Céspedes MV, Unzueta U., Saccardo P., Roldán M., Sánchez-Chardi A., et al. (2016). Nanopartículas de proteínas dirigidas a CXCR4 + producidas en la bacteria de grado alimenticio Lactococcus lactis . Nanomedicina 11 2387-2398. 10.2217 / nnm-2016-0200 [ PubMed ]

Paterson R. R. M. (2006). Ganoderma–A therapeutic fungal biofactory. Phytochemistry 67 1985– 2001. 10.1016/j.phytochem.2006.07.004 [PubMed] [Cross Ref ]

Paterson R. R. M. (2008). Cordyceps–A traditional Chinese medicine and another fungal therapeutic biofactory? Phytochemistry 69 1469–1495. 10.1016/j.phytochem.2008.01.027 [PubMed] [Cross Ref ]

Wadt NSY, Okamoto MKH, Bach EM, Bach EE (2015). Evaluación química, toxicológica, antiinflamatoria y antimicrobiana de extractos de Ganoderma lucidum . Emir. J. Food Agric. 27 577–584. 10.9755 / ejfa.2015.05.309

Gangadevi V., Muthumary J. (2008). Aislamiento de Colletotrichum gloeosporioides , un nuevo hongo endófito productor de taxol de las hojas de una planta medicinal, Justicia gendarussa . Mycol. Balc. 5 1–4.

Luengo JM, García B., Sandoval A., Naharro G., Oliveira ER (2003). Bioplásticos procedentes de microorganismos. Curr. Opin. Microbiol. 6 251–260. 10.1016 / S1369-5274 (03) 00040-7 [ PubMed ]

Ivanov V., Stabnikov V. (2016). “Plásticos biotecnológicos de construcción”, en Biotecnología de la construcción, parte de la serie Green Energy and Technology (Singapur: Springer;) 51–75. 10.1007 / 978-981-10-1445-1_4

Khor E., Lim LY (2003). Aplicaciones implantables de quitina y quitosano. Biomateriales 24 2339- 2349. 10.1016 / S0142-9612 (03) 00026-7 [ Pub- Med ]

Accinelli C., Abbas HK, Little NS, Kotowicz JK, Mencarelli M., Shier WT (2016). Una formulación líquida bioplástica para recubrimiento de película de semillas agronómicas. Crop Prot. 89 123–128. 10.1016 / j.foodhyd.2016.10.001

Pires ALR, Moraes AM (2015). Mejora de las propiedades mecánicas de los apósitos para heridas de algitosato de quitosano que contienen plata mediante la adición de un caucho de silicona biocompatible. J. Appl. Polym Sci. 132 : 41686 10.1002 / APP.41686

Bejenariu A., Popa M., Cerf DL, Picton L. (2008). Rigidez de los hidrogeles de xantano: síntesis, características de hinchamiento y propiedades de liberación controlada. Polym Toro. 61 631–641. 10.1007 / s00289-008-0987-6

Barua R., Alam MJ, Salim M., Ashrafee TS (2016). Producción y caracterización a pequeña escala de goma xantana sintetizada por aislamientos locales de Xanthomonas campestris . Indian J. Exp. Biol. 54 151-155. [ PubMed ]

Velu S., Velayutham V., Manickkam S. (2016). Optimización de los medios de fermentación para la producción de goma xantana de Xanthomonas campestris utilizando la metodología de superficie de respuesta y técnicas de redes neuronales artificiales. Indian J. Chem. Tecnol. 23 353–361.

Ruholahi F., Mohammadi M., Karimi K., Zamani A. (2016). Nickel biosorption by fungal chitosan from Mucor Indicus. J. Chitin. Chitosan. 4 69–73. 10.1166/jcc.2016.1102 [Cross Ref ]

Abdel-Gawad KM, Hifney AF, MA Fawzy, Gomaa M. (2017). Optimización tecnológica de la producción de quitosán a partir de biomasa de Aspergillus niger y sus actividades funcionales. Comida Hydrocoll. 63 593–601. 10.1016 / j.foodhyd.2016.10.001

Tayel AA, Gharieb MM, Zaki HR, Elguindy NM (2016b). Bio-clarificación de agua de metales pesados y efluencia microbiana utilizando quitosano fúngico. En t. J. Biol. Macromol. 83 277–281. 10.1016 / j.ijbiomac. 2015.11.072 [ PubMed ]

Hay ID, Rehman ZU, Moradali MF, Wang Y., Rehm BHA (2013). Producción de alginato microbiano, modificación y sus aplicaciones. Microbios Biotecnol. 6 637–650. 10.1111 / 1751-7915.12076 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Maleki S., Almaas E., Zotchev S., Valla S., Ertesvåg H. (2016). Alginate biosynthesis factories in Pseudomonas fluorescens: localization and correlation with alginate production level. Appl. Environ. Microbiol. 82 41227–41236. 10.1128/AEM.03114- 15 [PMC free article] [PubMed] [Cross Ref ]

Lee KY, Mooney DJ (2012). Alginato: propiedades y aplicaciones biomédicas. Prog. Polym Sci. 37 106-126. 10.1016 / j.progpolymsci.2011.06.003 [ Artículo libre de PMC ] [ PubMed ]

Su L., Jia W., Hou C., Lei Y. (2011). Biosensores microbianos: una revisión. Biosens. Bioelectron. 26 1788–1799. 10.1016 / j.bios.2010.09.005 [ PubMed ]

D’Souza SF (2001). Biosensores microbianos. Biosens. Bioelectron. 16 337–353. 10.1016 / S0956- 5663 (01) 00125-7 [ PubMed ] 49

Paitan Y., Biran D., Biran I., Shechter N., Babai R., Rishpon J., et al. (2003). On-line and in situ biosensors for monitoring environmental pollution. Biotechnol. Adv. 22 27–33. 10.1016/j.biotechadv.2003.08.014 [PubMed] [Cross Ref ]

Lei Y., Chen W., Mulchandani A. (2006). Biosensores microbianos. Anal. Chim Acta 568 200– 210. 10.1016 / j.aca.2005.11.065 [ PubMed ]

Bechor O., Smulski DR, Van Dyk TK, LaRossa RA, Belkin S. (2002). Microorganismos recombinantes como biosensores ambientales: detección de contaminantes por Escherichia coli con fusiones fabA ‘ :: lux. J. Biotechnol. 94 125-132. 10.1016 / S0168- 1656 (01) 00423-0 [ PubMed ]

Mulchandani A., Mulchandani P., Kaneva I., Chen W. (1998). Biosensor para la determinación directa de agentes nerviosos organofosforados utilizando Escherichia coli recombinante con organofosforosa hidrolasa expresada en la superficie. 1. Electrodo potenciométrico microbiano. Anal. Chem. 70 4140–4145. 10.1021 / ac9805201 [ PubMed ]

Kim HJ, Lim JW, Jeong H., Lee S.-J., Lee D.-W., Kim T., et al. (2016). Desarrollo de un biosensor microbiano de plomo y cadmio altamente específico y sensible utilizando un circuito genético sintético CadC- T7. Biosens. Bioelectron. 79 701–708. 10.1016 / j.bios.2015.12.101 [ PubMed ]

Kim KR, Song YH, Seo JH, Kang DG (2016). Efecto de las condiciones de cultivo sobre la actividad celular completa de Escherichia coli recombinante que expresa la hidrolasa organofosforosa periplásmica y la chaperona GroEL / ES citosólica. Biotecnología . Bioprocesos ing. 21 502–507. 10.1007 / s12257- 016-0342-y

Shin H. J. A. (2016). Recombinant microbial biosensor for cadmium and lead detection. J. Life Sci. 26 503–508. 10.5352/JLS.2016.26.5.503 [Cross Ref ]

Bharadwaj S., Mitchell RJ, Qureshi A., Niazi JH (2017). Evaluación de la toxicidad del jugo electrónico y sus aerosoles solubles generados por los cigarrillos electrónicos que utilizan bacterias bioluminiscentes recombinantes que responden a daños celulares específicos. Biosens. Bioelectron. 90 53–60. 10.1016 / j.bios.2016.11.026 [ PubMed ]

Rasinger JD, Marrazza G., Briganti F., Scozzafava A., Mascini M., Turner APF (2005). Evaluación de un biosensor amperométrico bacteriano operado por FIA, basado en Pseudomonas putida F1 para la detección de benceno, tolueno, etilbenceno y xilenos (BTEX). Anal. Letón. 38 1531-1547. 10.1081 / AL- 200065793

Timur S., Haghighi B., Tkac J., Pazarhoglu N., Telefoncu A., Gorton L. (2007). Cableado eléctrico de Pseudomonas putida y Pseudomonas fluorescens con polímeros redox de osmio. Bioelectroquímica 71 38-45. 10.1016 / j.bioelechem.2006.08.001 [ Pub- Med ]

Banik RM, Mayank Prakash R., Upadhyay SN (2008). Biosensor microbiano basado en células completas de Pseudomonas sp. Para la medición en línea de p-nitrofenol. Sens. Actuatators B Chem. 131 295– 300. 10.1016 / j.snb.2007.11.022

Stoytcheva M., Zlatev R., Magnin J.-P., Ovalle M., Valdez B. (2009). Leptospirillum ferrooxidans baseadora Fe 2+ sensor. Biosens. Bioelectron. 25 482–487. 10.1016 / j.bios.2009.08.019 [ PubMed ]

Zlatev R., Magnin J.-P., Ozil P., Stoytcheva M. (2006). Sensores bacterianos basados en Acidithiobacillus ferrooxidans : parte I. Determinación de Fe 2+ y S 2 O 3 2- . Biosens. Bioelectron. 21 1493-1500. 10.1016 / j.bios.2005.07.007 [ PubMed ]

Katrlik J., Vostiar I., Sefcovicova J., Tkac J., Mastihuba V., Valach M., et al. (2007). Un nuevo biosensor microbiano basado en células de Gluconobacter oxydans para la determinación selectiva de 1,3-propanodiol en presencia de glicerol y su aplicación al monitoreo de bioprocesos. Anal. Bioanal Chem. 388 287-295. 10.1007 / s00216-007-1211-5 [ PubMed ]

Valach M., Katrlik J., Sturdik E., Gemeiner P. (2009). Biosensor de etanol Gluconobacter diseñado para análisis de inyección de flujo: aplicación en el monitoreo fuera de línea de fermentación de etanol. Sens. Actuadores B 138 581–586. 10.1016 /j.snb.2009.02.017

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