Desafíos en el diagnóstico de sífilis congénita
La sífilis es una enfermedad de transmisión sexual producida por Treponema pallidum subsp pallidum; ésta puede ser adquirida de forma congénita y las manifestaciones clínicas son muy variables. Uno de los desafíos en el diagnóstico de la sífilis congénita es la detección temprana de la enfermedad ya que es crucial para la prevención de las devastadoras complicaciones. El diagnóstico de la sífilis se basa en las características clínicas, la observación de los microorganismos mediante microscopía de campo oscuro y pruebas serológicas; la detección molecular del microorganismo se ha implementado con varios propósitos, ya que permitiría un diagnóstico precoz y efectivo de la sífilis que dará lugar a un tratamiento oportuno; la
prevención de la progresión de la enfermedad y las complicaciones de la sífilis congénita.
Galban E, Benzaken AS. Situación de la sífilis en 20 países de Latinoamérica y el caribe: Año 2006. J obras Doencas Sex Trasm. 2007; 19(3-4): p. 166-72.
World Health Organization. Global prevalence and incidence of selected curable sexually transmitted infections overview and estimates. World Health Organization. 2001; Geneva.
Acosta G, Ibáñez E, Alfonso A, Cifuentes L. Conductas de salud y factores de riesgo en la salud sexual y reproductiva de una población universitaria. NOVA. 2010; 8(13): p. 32-43.
Rodriguez F, Barreto P, Sánchez R. Detección de Chlamydia trachomatis en hombres que tienen sexo con hombres en Bogotá: un estudio piloto. NOVA. 2016; 14(26): p. 24-25.
Luu M, et al. Syphilis testing in antenatal care: policies and practices among laboratories in the Americas. Int J Gynaecol Obstet. 2015; 130(1): p. S37-S42.
Martin IE, Gu W, Yang Y, Tsang RS. Macrolide resistance and molecular types of reponema pallidum causing primary syphilis in Shanghai, China. Clin Infect Dis. 2009; 49(4): p. 515-21.
Chowdhary N, et al. Early detection of congenital syphilis. J Indian Soc Pedod Prev Dent. 2014; 32(4): p. 333-7.
Valderrama J. Eliminación de sífilis congénita en América Latina y el Caribe: marco de referencia para su implementación. Organización Panamericana de la Salud. 2005; Washington, D.C.
Santis M De, Luca C De, Mappa I, Spagnuolo T, Licameli A, Straface G, Scambia G. Syphilis infection during pregnancy: Fetal risks and clinical management. Infect Dis Obstet Gynaecol. 2012; 2012(Article ID 430585): p. 1–5.
Martin IE, Tsang RS, Sutherland K, et al. Molecular characterization of syphilis in patients in Canada: azithromycin resistance and detection of Treponema pallidum DNA in whole-blood samples versus ulcerative swabs. J Clin Microbiol. 2009; 47(6): p. 1668-73.
Pope V, Fox K, Liu H, et al. Molecular subtyping of Treponema pallidum from North and South Carolina. J Clin Microbiol. 2005; 43(8): p. 3743-6.
Valderrama J, Zacarías F, Mazin R. Sífilis materna y sífilis congénita en América Latina: un problema grave de solución sencilla. Rev Panam Salud Publica. 2004 sept; 16(3): p. 211-17.
Equipo Infecciones de Transmisión Sexual, grupo de transmisibles, INS. Protocolo de vigilancia en salud publica, sifilis gestacional y sifilis congenita. INS. 2014; Bogotá.
Organización Panamericana de la Salud. Guía clínica para la eliminación de la transmisión maternoinfantil del VIH y de la sífilis congénita en América Latina y
el Caribe. Washington, D.C.: OPS. 2009.
Pinilla G, Chavarro B, Moreno N, Navarrete J, Muñoz L. Determinación de los genes, 16S ADNr, polA, y TpN47, en la detección de Treponema pallidum subsp. pallidum para el diagnóstico de sífilis congénita. NOVA. 2015; 13(24): p. 17-25.
Wahab AA, Ali UK, Mohammad M, Md. Monoto EM, Rahman MM. Syphilis in pregnancy. Pak J Med Sci. 2015; 31(1): p. 217-9.
Taylor MM, et al. Correlates of syphilis seropositivity and risk for syphilis-associated adverse pregnancy outcomes among women attending antenatal care clinics in the Democratic Republic of Congo. Int J STD AIDS. 2014; 25(10): p. 716-25.
Tolosa N. Sifilis gestacional y sifilis congénita. Protocolo de vigiliancia en salud publica. Instituto Nacional de Salud. 2014; version 01:2.
Radolf JD. Treponema. In S B, editor. Medical Microbiology 4a edición. Galveston (TX): University of Texas Medical Branch at Galveston; 1996. p. Capítulo 36.
Ryan K, Ray G. Sherris. Microlobiología Médica. Quinta edición ed. México: Mc Graw Hill; 2010.
Berman SM. Maternal syphilis: pathophysiology and treatment. Bull World Health Organ. 2004; 82(6): p. 433-8.
Fraser CM, Norris S, Weinstock GM, et al. Complete genome sequence of Treponema pallidum syphilis spirochete. Science. 1998 jul; 281(5375): p. 375-88.
Pětrošová H, Pospíšilová P, Strouhal M, Čejková D, Zobaníková M, Mikalová L, Sodergren E, Weinstock GM, Šmajs D. Resequencing of Treponema pallidum ssp. pallidum strains Nichols and SS14: correction of sequencing errors resulted in increased separation
of syphilis treponeme subclusters. PLoS One. 2013 sept; 8(9): p. 1-8.
Paz LE. Treponema pallidum: estructura y antigenicidad. Univ. Cienc. Soc. 2010; 1(2): p. 42-4.
Garza-Velasco R, et al. La sífilis y los principales factores de virulencia de Treponema pallidum. Universidad Nacional Autónoma de México, Departamento de biología. Internet]. ; Disponible en: http://depa.fquim.unam.mx/bacteriologia/pdfs/ART%CDC-Tpallidum.pdf.
Ministerio de la protección social, República de Colombia. Guia clinica de atencion de la sífilis congénita. [Internet]. Bogotá. ; Disponible en: https://www.minsalud.gov.co/Documentos%20y%20Publicaciones/GUIA%20DE%20ATENCION%20DE%20LA%20SIFILIS%20CONGENITA.pdf.
Singh AE, Levett PN, Fonseca K, Jayaraman GC, Lee BE. Canadian Public Health Laboratory Network laboratory guidelines for congenital syphilis and syphilis screening in pregnant women in Canada. Can J Infect Dis Med Microbiol. 2015; 26(Suppl A):
p. 23A-28A.
Phiske MM. Current trends in congenital syphilis. Indian J Sex Transm Dis. 2014; 35(1): p. 12-20.
Liu H, Rodes B, Chen C-Y, Steiner B. New tests for syphilis: rational design of a PCR method for detection of Treponema pallidum in clinical specimens using unique regions of the DNA Polymerase I Gene. J Clin Microbiol. 2001; 39(5): p. 1941-46.
Herring A, Ballard R, Mabey D, Peeling RW. Evaluation of rapid diagnostic tests: syphilis. Nat Rev Microbiol. 2006; 4(Suppl 12): p. S33-40.
Pinilla G, et al. Detección de Treponema pallidum subespecie pallidum para el diagnóstico de sífilis congénita mediante reacción en cadena de la polimerasa
anidada. Biomédica. 2017; 38(ISSN 0120- 4157).
Shields M, Guy RJ, Jeoffreys NJ, Finlayson RJ, Donovan B. A longitudinal evaluation of Treponema pallidum PCR testing in early syphilis. BMC Infect Dis. 2012 dic; 12: p. 353.
Peeling RW, Ye H. Diagnostic tools for preventing and managing maternal and congenital syphilis: an overview. Bull World Health Organ. 2004; 82(6): p. 439-46.
Centurion-Lara A, Castro C, Shaffer JM, Van Voorhis WC, Marra CM, Lukehart SA. Detection of Treponema pallidum by a sensitive reverse transcriptase PCR. J Clin Microbiol. 1997; 35(6): p. 1348-52.
Morales-Múnera CE, et al. Update on the diagnosis and treatment of syphilis. Actas Dermosifiliogr. 2015; 106(1): p. 68-9.
Ham DC, et al. Improving global estimates of syphilis in pregnancy by diagnostic test type: A systematic review and meta-analysis. Int J Gynaecol Obstet. 2015; 130(Suppl 1): p. S10-4.
Grange PA, Gressier L, Dion PL, et al. Evaluation of a PCR Test for Detection of Treponema pallidum in swabs and blood. Journal of Clinical Microbiology. 2012 mzo; 50(3): p. 546-52.
Heymans R, et al. Clinical value of Treponema pallidum Real-Time PCR for diagnosis of syphilis. J. Clin. Microbiol. 2010 febr; 48(2): p. 497-502.
Palmer HM, Higgins SP, Herring AJ, Kingston MA. Use of PCR in the diagnosis of early syphilis in the United Kingdom. Sex Transm Infect. 2003 dic; 79(6):p. 479-83.
Burstain JM, Grimprel E, Lukehart SA, Norgard MV, Radolf JD. Sensitive detection of Treponema pallidum by using the polymerase chain reaction. J Clin Microbiol. 1991 en; 29(1): p. 62-9.
Casal CA, Silva MO, Costa IB, Araújo Eda C, Corvelo TC. Molecular detection of Treponema pallidum sp. pallidum in blood samples of VDRL-seroreactive women with lethal pregnancy outcomes: a retrospective observational study in northern Brazil. Rev.
Soc. Bras. Med. Trop. 2011; 44(4): p. 451-6.
Woznicová V, Šmajs D, Wechsler D, Matějková P, Flasarová M. Detection of Treponema pallidum subsp. pallidum from skin lesions, serum, and cerebrospinal fluid in an infant with congenital syphilis after clindamycin treatment of the mother during pregnancy.
J Clin Microbiol. 2007 febr; 45(2): p. 659-61.
Wicher K, Horowitz H, Wicher V. Laboratory methods of diagnosis of syphilis for the beginning of the third millennium. Microbes Infect. 1999 oct; 1(12): p. 1035-49.
Grimprel E, Sanchez PJ, Wendel GD, et al. Use of polymerase chain reaction and rabbit infectivity testing to detect Treponema pallidum in amniotic fluid, fetal and neonatal sera, and cerebrospinal fluid. J Clin Microbiol. 1991; 29(8): p. 1711-8.
Ferreira SC, de Almeida-Neto C, Nishiya AS, Di-Lorenzo- Oliveira C, et al. Prevalence of Treponema pallidum DNA among blood donors with two different serologic tests profiles for syphilis in Sao Paulo, Brazil. Vox Sang. 2014; 106(4): p. 376-8.
Hsu PL, Chamberlain NR, Orth K, et al. Sequence analysis of the 47-kilodalton major integral membrane immunogen of Treponema pallidum. Infect Immun. 1989; 57(1): p. 196-203.
Gayet-Ageron A, Laurent F, et. al. Performance of the 47-kilodalton membrane protein versus DNA polymerase i genes for detection of Treponema pallidum by PCR in ulcers. J Clin Microbiol. 2015 mzo; 53(3): p. 976-80.
Strouhal M, Čejková D, Zobaníková M, Mikalová L, Sodergren E, Weinstock GM, Šmajs D. Resequencing of Treponema pallidum ssp. pallidum strains Nichols and SS14: correction of sequencing errors resulted in increased separation of syphilis treponeme
subclusters. PLoS One. 2013 sept; 8(9): p. 1-8.
Castro R, Águas MJ, Batista T, Araujo C, Mansinho K, Pereira Fda L. Detection of Treponema pallidum sp. pallidum DNA in cerebrospinal fluid (CSF) by two PCR techniques. J Clin Lab Anal. 2016; 30(5): p. 628-32.
Pinilla G, Muñoz L, Navarrete J, Arévalo P. El ataque de las bacterias: cómo prevenirlo sin morir en el intento. NOVA. 2012; 10(18): p. 227-236.
