Producción de embriones bovinos del laboratorio INVITRO COLOMBIA durante el año 2019.

Lilian  Bonilla Leon; Danilo Bonilla Trujillo; Ramón Guillermo  Gómez Domínguez

doi:10.22490/ECAPMA.4242

Vol. 5 Núm. 1 (2021)

Publicado

2021-06-10

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Producción de embriones bovinos del laboratorio INVITRO COLOMBIA durante el año 2019.

DOI: https://doi.org/10.22490/ECAPMA.4242

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Artículos

Lilian Bonilla Leon

Danilo Bonilla Trujillo Universidad Nacional Abierta y a Distancia

Ramón Guillermo Gómez Domínguez INVITRO COLOMBIA SAS

Contextualización: La fecundación in vitro surgió hace 40 años, es una de las biotecnologías reproductivas que actualmente se están aplicando en el país, produciendo embriones comercialmente a gran escala en bovinos, la cual aumenta el aprovechamiento del potencial genético de la hembra.

Vacío del conocimiento: Colombia no presenta constantemente datos de producción ya que los laboratorios comerciales no publican sus resultados, evitando un posicionamiento del país en el mapa mundial de la biotecnología reproductiva aplicada a la producción comercial.

Propósito del estudio: La intención de este estudio es realizar un acercamiento a la producción promedio de un laboratorio dedicado a la producción de embriones in vitro en bovinos (PEIV) en Colombia.

Metodología: Se evaluó la producción de embriones del laboratorio INVITRO COLOMBIA SAS, del año 2019, en cuanto a la PEIV, teniendo en cuenta técnicas como la Aspiración folicular (OPU), la cual se puede realizar por la presencia de ondas foliculares del ciclo estral del bovino las cuales permiten que la colección de oocitos durante toda su vida productiva, Maduración in vitro (MIV), Fecundación in vitro (FIV) y Cultivo in vitro (CIV), 8 días después de la aspiración folicular son entregados los embriones producidos. Se evaluaron variables correspondientes a producción y preferencia racial y zootécnica en la aplicabilidad de la técnica por parte del productor. Para el análisis se utilizó estadística descriptiva por medio de la obtención de promedios.

Resultados y conclusiones: La producción de oocitos por donante es de 24 por sesión, la producción de embriones promedio fue de 4. La obtención de oocitos viables corresponde al 83.7%, la división de zigotos fue de 66.5% y la producción de embriones a partir de los oocitos viables fue de 19.3%. En cuanto a la vocación zootécnica de los animales sometidos a la técnica en un 76.4% corresponde a ganadería de leche y un 23.6% a ganadería de carne. La raza en la que se utiliza más la técnica es la raza Gyr, especialmente para cruces con razas europeas para la producción de F1 adaptados para ganadería de leche en el trópico, así como la Guzerat y la Brahman.

Aspiración folicular, fecundación in vitro, embriones, reproducción asistida en bovinos, biotecnología reproductiva

Adams, G. P., Singh, J., & Baerwald, A. R. (2012). Large animal models for the study of ovarian follicular dynamics in women. Theriogenology, 78(8), 1733-1748.

https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2012.04.010

Bonilla León, L., Mejía Gallego, A., Gómez Domínguez, R., Torres Londoño, M., & Uribe García, F. (2018). Viabilidad y tasa de preñez de embriones producidos in vitro a partir de semen sexado comparado con semen convencional en Bos taurus y Bos indicus. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 29(4), 1377-1385.

https://doi.org/10.15381/rivep.v29i4.14297

da Costa, N. N., Brito, K. N., Santana, P. d., Cordeiro, M., Silva, T. V., Santos, A. X., Ramos, P., Santos, S., King, W. A., Miranda, M., & Ohashi, O. M. (2016). Effect of cortisol on bovine oocyte maturation and embryo development in vitro. Theriogenology, 85(2), 323-329.

https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2015.08.010

Eid, L.N., Lorton, S. P., & Parrish, J.J. (1994). Paternal Influence on S-Phase in the First Cell Cycle of the Bovine Embryo. Biology of Reproduction, Volume 51, Issue 6, 1 December 1994, Pages 1232-1237.

https://doi.org/10.1095/biolreprod51.6.1232

First, N.L.; Parrish, J.J. (1988). Sperm Maturation and In Vitro Fertilization. The 11th Int. Congress on Reprod. A.I; Dublin, Ireland. p. 160-8. https://catalog.hathitrust.org/Record/102255802

Ginther, O.J., Pinaffi, F.L., Khan, F.A., Duarte, L.F., & Beg, M.A. (2013). Follicular-phase concentrations of progesterone, estradiol-17b, LH, FSH, and a PGF2a metabolite and daily clustering of prolactin pulses, based on hourly blood sampling and hourly detection of ovulation in heifers. Theriogenology, 79, 918-928.

https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2012.12.015

Guerreiro, B. M., Batista, E. O., Vieira, L. M., Sá Filho, M. F., Rodrigues, C. A., Castro Netto, A., Silveira, C. R., Bayeux, B. M., Dias, E. A., Monteiro, F. M., Accorsi, M., Lopes, R. N., & Baruselli, P. S. (2014). Plasma anti-mullerian hormone: an endocrine marker for in vitro embryo production from Bos taurus and Bos indicus donors. Domestic animal endocrinology, 49, 96-104.

https://doi.org/10.1016/j.domaniend.2014.07.002

International Embryo Transfer Society (IETS). (2014). Statistics of embryo collection in farm animals. https://www.iets.org/pdf/comm_data/December2015.pdf

Leibfried-Rutledge, M.L., Critser, E.S., Parrish, J.J., & First, N.L. (1989). In vitro maturation and fertilization of bovine oocytes. Theriogenology; 31:61-74. https://doi.org/10.1016/0093-691X(89)90564-5

Machaty, Z., Peippo, J., & Peter, A. (2012). Production and manipulation of bovine embryos: techniques and terminology. Theriogenology, 78(5), 937-950. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2012.04.003

Morotti, F., Sanches, B. V., Pontes, J. H., Basso, A. C., Siqueira, E. R., Lisboa, L. A., & Seneda, M. M. (2014). Pregnancy rate and birth rate of calves from a large-scale IVF program using reverse-sorted semen in Bos indicus, Bos indicus-taurus, and Bos taurus cattle. Theriogenology, 81(5), 696-701. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2013.12.002

Perez, B. C., Peixoto, M. G., Bruneli, F. T., Ramos, P. V., & Balieiro, J. C. (2016). Genetic analysis of oocyte and embryo production traits in Guzerá breed donors and their associations with age at first calving. Genetics and molecular research: GMR, 15(2), 10.4238/gmr.15027583. https://doi.org/10.4238/gmr.15027583

Plourde, D., Vigneault, C., Laflamme, I., Blondin, P., & Robert, C. (2012). Cellular and molecular characterization of the impact of laboratory setup on bovine in vitro embryo production. Theriogenology 77: 1767-1778.

https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2011.12.021

Sanches, B. V., Zangirolamo, A. F., & Seneda, M. M. (2019). Intensive use of IVF by large-scale dairy programs. Animal Reproduction, 16(3), 394-401. Epub November 28, 2019. https://doi.org/10.21451/1984-3143-AR2019-0058

Seneda, M. M., Esper, C. R., Garcia, J. M., Oliveira, J. A., & Vantini, R. (2001). Relationship between follicle size and ultrasound-guided transvaginal oocyte recovery. Animal reproduction science, 67(1-2), 37-43. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(01)00113-0

Bonilla Leon, L. ., Bonilla Trujillo, D., & Gómez Domínguez, R. G. . (2021). Producción de embriones bovinos del laboratorio INVITRO COLOMBIA durante el año 2019. Documentos De Trabajo ECAPMA, 5(1), 6-16. https://doi.org/10.22490/ECAPMA.4242